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Exame [mnemônico]

HEMOCULTURA [CT-HM]

Material [mnemônico]

SANGUE [S]

Condições

– Sangue total (frasco próprio de hemocultura convencional).

Tempo de jejum

Questionário

Comentários

Palavras chaves Cultura de sangue Coleta – Colher em frascos específicos para hemocultura convencional, HEMOPROV I (fornecido pelo HP) ou HEMOCULT. – Não coletar em ambiente aberto, com corrente de ar; – Lavar e secar as mãos cuidadosamente; – Selecionar o local da punção. Caso necessário, utilizar o garrote. Após seleção da veia, afrouxar o garrote; – Retirar a tampa de proteção do meio de cultura, sem remoção total do anel de alumínio que protege o frasco, e desinfetar a tampa de borracha com algodão e álcool etílico a 70%, colocar uma gaze estéril protegendo a tampa, enquanto é feita a assepsia do local de punção. – Limpar o local da punção com algodão embebido em álcool etílico 70%, em círculos concêntricos (do centro para as bordas), sem voltar com o algodão para o centro. – Em seguida, limpar o local da punção com algodão embebido em clorexidina 2% em círculos concêntricos (conforme descrito no item acima). – Esperar secar para que o antisséptico exerça seu efeito no local. – Retirar a clorexidina com algodão embebido em álcool etílico 70% . – Deixar secar completamente (de 30 segundos a 2 minutos). Não assoprar, não abanar e não colocar nada no local; – Após limpar o local, não mais tocá-lo; – Trocar as luvas, garrotear e puncionar, sem apalpar a veia; – Se coleta for feita com scalp, posicionar o frasco de hemocultura abaixo do local da punção e na posição vertical, observando a quantidade de sangue que está fluindo no frasco. – Se coleta for feita com seringa e agulha, transferir o sangue imediatamente para o frasco de hemocultura sem trocar a agulha. Se houver suspeita de contaminação, trocar a agulha imediatamente antes de transferir o sangue para o frasco. – Homogeneizar os frascos cuidadosamente (lentamente) por inversão. – O intervalo entre a coleta e o número das amostras varia de acordo com a suspeita clínica, devendo preferencialmente ser especificado pelo médico. Quando não especificado os tempos, colher com espaço de 30 minutos cada amostra, conforme abaixo: . 1 amostra: colher em um braço 1 frasco de hemocultura convencional. . 2 amostras: colher 1 frasco de hemocultura e, após o intervalo de 30 minutos, colher a outra amostra no outro braço. . 3 amostras: colher 1 frasco de hemocultura convencional e colher as outras 2 amostras 30 e 60 minutos após a primeira coleta, alternando os braços a serem coletados. – Quando houver solicitação de hemocultura para anaeróbios especificada, usar também o frasco próprio para anaeróbios. Neste caso proceder a coleta simultaneamente com o frasco convencional na primeira punção. – As principais dificuldades deste exame consistem em se definir se o agente isolado é ou não contaminante. Portanto, os cuidados referentes ao processo de assepsia devem ser rigorosamente obedecidos. – A sensibilidade do exame esta diretamente relacionada ao volume de sangue colhido. Quanto maior o volume da amostra, maior a possibilidade de se isolar a bactéria. – A especificidade aumenta quando as coletas são feitas em sítios diferentes. – O melhor índice de recuperação bacteriana ocorre quando a coleta é realizada 1 hora antes do pico febril. – Na ausência de clorexidina 2% para realizar a assepsia, pode-se utilizar álcool iodado a 2%. – Para os casos de hipersensibilidade ao iodo, utilizar a clorexidina ou fazer uma criteriosa assepsia com álcool (etilico ou isopropilico) a 70%. Comentários – A hemocultura auxilia no diagnóstico de processos infecciosos sistêmicos. Alguns fatores podem interferir no resultado da hemocultura, como a possibilidade de contaminação com flora normal da pele, volume de sangue cultivado, e uso de antimicrobianos. O número de amostras necessárias e o intervalo entre as coletas variam de acordo com a suspeita clínica.

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